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再生水中溶解性有机质和双酚A对浮水植物的复合胁迫效应

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文档简介:

的复合污染对水生生物影响研究目前主要集中在藻类和菌类等微生物的毒性效应机制及其水体生物修复效率等方面[1315],而以高等水生植物为研究对象的报道较少[1618]。虽已有部分研究结果表明,植物组织的过氧化物酶(POD)活性、丙二荃(MDA)积累量等生理指标对污染物胁迫作用存在一定程度的响应[1922],但对水生植物受复合污染作用的生理学变化特征及其响应机制尚缺少系统性研究。本研究选择景观水体中常见的莲属(犖犲犾狌犿犫狅)多年生草本植物作为受试植物,以双酚A(BPA)为代表性EDCs污染物,采用污水处理厂二级出水为再生水基底,在静水培养条件下考察DOM与BPA植物毒性作用的复合效应,可为EDCs类化学品的健康风险评估和环境安全评估积累科学数据,为制定相关的再生水质卫生标准提供科学依据。1材料与方法1.1仪器与试剂IL500总有机碳测定仪(美国哈希公司);BlueStarA紫外可见分光光度计;SHZ82恒温振荡水浴;TGL20BC台式高速离心机。BPA(色谱纯,纯度≥99%,Aldrich公司),腐植酸(分析纯,Aldrich公司),其余试剂均为分析纯;再生水为西安市某污水处理厂二级出水(溶解性有机碳(DOC)为5.4mg/L),稀释用水为曝气除氯的实验室自来水。1.2受试生物受试植物为碗莲(犖犲犾狌犿犫狅狀狌犮犻犳犲狉犪),挑选颗粒饱满无病害、形态均一的碗莲种子,在实验前用2%(质量分数)次氯酸钠溶液浸泡消毒10min,以蒸馏水洗净后放入3L培养皿中,每皿为一个暴露组,每组随机选取培养的10粒种子。1.3实验方法为模拟再生水中不同DOM(以DOC浓度表征)梯度,用曝气除氯的实验室自来水将二级出水稀释作为低浓度水样,另外通过加入一定体积的商品腐植酸溶液(初始质量浓度为1g/L)的二级出水作为高浓度水样,最终配制成所需浓度的DOM水样。将BPA溶于超纯水配制成初始质量浓度为100mg/L的高浓度储备液,再用自来水稀释配成所需浓度的BPA水样。每组暴露组设置3个平行,受试植物分别暴露于含DOM为0、1.2、5.4、16.5mg/L和含BPA为0、1、10、100μg/L的两两交叉配制的混合水样中,其中混合水样使用前需经恒温振荡混匀1h。含DOM为0mg/L和含BPA为0μg/L的混合水样(仅采用自来水)即为空白组。各暴露组加入相应的水样后,移至室外自然光照下培养(每日日照时间>6h,14:00—16:00上覆防晒网防止幼苗损伤),每隔24h换水一次,并记录水温、pH、氧化还原电位和环境湿度等相关指标及受试植物组织生长状况。培养28d后采集形态完整的植物叶片作为测试对象。1.4分析指标及数据处理方法单位鲜质量植物叶片组织中MDA采用硫代巴比妥酸(TBA)法测定;POD活性采用愈创木酚法测定[23]。每个生理指标的数据均以平均值±标准偏差表示,采用SigmaPlot10.0软件作图。所有统计分析均采用SPSS19.0软件,各组实验数据均做方差齐性的levene同质性检验,采用单变量多因素方差分析法(GLMUnivariate)对不同暴露组数据进行差异显著性检验,当狆<0.05时认为存在显著性差异,狆<0.01时认为存在极显著性差异。采用Ⅲ类线性模型作全模型单变量多因素回归分析。2结果与讨论在实验过程中,未出现受试植物因环境变动、病变等因素造成的死亡、病态或畸形现象。100μg/LBPA加入再生水中混合均匀静置24h后测定水中BPA浓度,BPA的静态吸附率低于1%,这与已有研究结果一致[24],表明在实验浓度范围内DOM存在不会明显影响BPA的水溶性。2.1DOM和BPA复合效应对植物叶片MDA含量的影响MDA含量是植物细胞膜质过氧化程度的体现[25]。在逆境条件下,MDA含量增加,说明植物的细胞质膜及内膜结构受到活性氧积累诱发的脂质过氧化作用而损坏,从而间接反映植物的抗逆性程度。DOM和BPA复合效应对植物叶片中MDA的影响见图1。MDA数据levene同质性检验的狆=0.175>0.05,表明各组数据方差具有齐性。线性回归分析的狉2=0.966(狆<0.05),表明DOM和BPA这两个因素可以较好地解释植物叶片MDA含量变化。DOM、BPA单独效应及两者交互效应的犉值分别为136.760、121.152、62.476,对应的狆<0.05,表明DOM、BPA及两者的复合效应均对植物叶片MDA升高具有显著性作用,对于5.4、16.5mg/L的DOM与BPA的复合效应显著性较强。单独DOM和单独BPA的各浓度暴露组植物叶片中的MDA·2·环境污染与防治第37卷第9期2015年9月含量分别比空白组增加26.7%~71.5%、11.5%~46.1%,对植物叶片MDA含量升高并无显著性贡献。但是当两者同时存在时,在高质量浓度DOM(

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